外泌体NTA试验

📅 发布时间:2026-10-23 👤 来源:北检院 👁 阅读:

技术概述

外泌体NTA试验是一种基于纳米颗粒跟踪分析技术对外泌体进行表征的检测手段。外泌体是细胞分泌的直径约为30-150纳米的细胞外囊泡,广泛存在于血液、尿液、细胞培养上清等生物体液中,携带蛋白质、核酸、脂质等生物活性分子,在细胞间通讯、疾病标志物筛选、药物递送等研究领域具有重要价值。对外泌体进行准确的粒径分布和浓度测定,是外泌体研究和质量控制中的关键环节。

NTA(Nanoparticle Tracking Analysis,纳米颗粒跟踪分析)技术的基本原理是:利用激光束照射样品池中的纳米颗粒悬液,颗粒在溶液中做布朗运动,通过散射光成像,配合高速摄像机连续采集颗粒的运动视频,逐个跟踪颗粒的布朗运动轨迹,再依据斯托克斯-爱因斯坦方程计算颗粒的流体力学直径,同时通过视频中的颗粒计数获得颗粒的绝对浓度。与传统的动态光散射(DLS)技术相比,NTA具有单颗粒检测能力,可以直接获得粒径分布信息和颗粒浓度信息,尤其适合多分散体系的外泌体样品表征,是目前外泌体研究领域公认的粒径与浓度分析主流方法之一。

外泌体NTA试验可以获得样品中颗粒的平均粒径、粒径分布峰形、D10/D50/D90等分位粒径以及每毫升样品中的颗粒总数等数据,为判断外泌体分离纯化效果、批次间一致性以及后续功能实验的开展提供定量依据。

检测样品

外泌体NTA试验适用的样品类型较为广泛,凡含有外泌体或细胞外囊泡的液体样品均可送检,常见的样品类型包括:

  • 细胞培养上清:各种细胞系、原代细胞条件培养基中的外泌体;
  • 血清与血浆:人及各种动物来源的血清、血浆样品;
  • 尿液:人或动物尿液来源的细胞外囊泡;
  • 脑脊液:中枢神经系统疾病研究中的脑脊液样品;
  • 腹水、胸水等体液样品;
  • 唾液、乳汁、羊水等其他生物体液;
  • 植物来源细胞外囊泡样品;
  • 已分离纯化的外泌体样品:如超速离心、试剂盒提取、尺寸排阻色谱等方法获得的外泌体悬液;
  • 工程化外泌体:载药或修饰后的外泌体样品。

送检样品一般建议低温保存并使用干冰运输,避免反复冻融导致外泌体破裂或聚集成大颗粒团块,从而影响检测结果的准确性。

检测项目

外泌体NTA试验主要围绕颗粒的物理特性开展检测,具体检测项目包括:

  • 颗粒平均粒径:样品中所有跟踪颗粒的平均流体力学直径;
  • 粒径分布:颗粒大小分布曲线及主峰位置,判断外泌体粒径是否集中在典型区间;
  • 特征粒径参数:D10、D50、D90等粒径分位数值,反映粒径分布的离散程度;
  • 颗粒浓度:单位体积样品中的颗粒总数,通常以particles/mL表示;
  • 粒径分布图谱:直观展示不同粒径区间颗粒的占比情况;
  • 标准粒径颗粒验证:使用标准纳米颗粒对仪器进行校准确认,保障数据可靠性。

除NTA试验外,外泌体表征通常还可结合透射电子显微镜观察形态、 Western Blot检测标志蛋白、流式细胞分析等多种手段,形成完整的外泌体鉴定体系,具体可根据研究需要选择组合方案。

检测方法

外泌体NTA试验的标准流程主要包括样品前处理、仪器校准、上机检测和数据分析四个环节,具体操作方法如下:

首先进行样品前处理。收到样品后,需对外泌体样品进行适度离心,去除可能存在的细胞碎片、蛋白聚集体等大颗粒杂质和沉淀物,避免杂质颗粒干扰检测。随后根据预实验结果对样品进行合理稀释,使视野中的颗粒浓度处于仪器最佳检测范围内。稀释过程应使用经0.22微米或更小孔径滤膜过滤处理的无菌PBS缓冲液,避免缓冲液本身含有杂质颗粒引入背景干扰。

其次进行仪器校准与参数设置。上机前使用标准尺寸的纳米颗粒(如标准聚苯乙烯微球)对仪器进行校准,验证仪器状态正常。根据样品情况设置合适的拍摄灵敏度、快门速度和检测阈值,确保颗粒清晰可见且无明显背景噪声。

然后进行上机检测。将处理好的样品注入样品池,使用注射泵控制样品匀速流动,在多个视野下连续采集多段视频,每个视频记录颗粒的布朗运动轨迹,仪器软件自动完成颗粒定位、轨迹跟踪和粒径计算。

最后进行数据分析与报告出具。软件对多段视频的数据进行汇总统计,输出平均粒径、粒径分布、D50、颗粒浓度等结果,并由实验人员对数据进行审核,判断数据质量,出具正式的检测报告。

检测仪器

外泌体NTA试验所使用的核心仪器为纳米颗粒跟踪分析仪,目前科研领域常用的仪器设备包括:

  • 马尔文 NanoSight系列纳米颗粒跟踪分析仪:配备激光光源模块、高速科学级CMOS相机和专业分析软件,是外泌体研究中应用最广泛的NTA设备之一,支持不同波长激光光源的更换,以适配不同样品的散射特性;
  • Particle Metrix ZetaView系列纳米颗粒跟踪分析仪:可实现多点位自动测量,有效降低单一视野带来的统计误差,同时具备Zeta电位检测功能,可对外泌体表面电荷进行表征;
  • 配套设备:微量注射泵、高速离心机、超净工作台、0.22微米滤膜过滤器等辅助设备,用于样品前处理和进样控制。

仪器定期使用标准颗粒进行校准和性能验证,保证不同批次样品检测数据的可比性和重复性。

应用领域

外泌体NTA试验的应用领域十分广泛,涵盖生命科学研究的多个方向,主要包括:

  • 基础医学研究:细胞间通讯机制研究、外泌体分泌规律探索等;
  • 肿瘤研究:肿瘤来源外泌体的表征,液体活检标志物筛选,肿瘤进展与转移机制研究;
  • 疾病诊断研究:基于血液、尿液等体液中外泌体的疾病早期诊断标志物开发,涉及神经系统疾病、心血管疾病、代谢性疾病等;
  • 药物递送研究:工程化外泌体作为药物载体的粒径控制、载药效率评价和批次质量控制;
  • 再生医学研究:干细胞外泌体在组织修复与再生中的功能研究及产品开发;
  • 免疫学研究:免疫细胞来源外泌体的免疫调节功能研究;
  • 中药与植物研究:植物来源细胞外囊泡的分离表征与功能开发;
  • 化妆品与生物制品开发:外泌体类产品的质量研究与放行检测。

通过NTA试验获得的粒径与浓度数据,是外泌体研究中不可或缺的基础表征信息,广泛应用于论文发表、课题申报、产品开发等多个场景。

常见问题

问题一:外泌体NTA试验的检测周期是多久?

外泌体NTA试验的检测周期一般为7-15个工作日。实际周期会受到多种因素的影响:如果检测项目数量较多或送检样品数量较大,整体周期会相应延长;样品前处理的复杂程度也会影响进度,例如杂质较多、需要额外离心纯化的样品处理时间更长;若研究方案中包含方法学优化或重复验证等环节,周期也会有所增加。对于有时间要求的客户,可以提前沟通安排加急处理,实验室会根据实际排机情况尽量协调,缩短报告出具时间。建议在送检前与技术人员充分沟通检测需求,以便合理安排检测计划。

问题二:外泌体NTA试验的检测价格是多少?

外泌体NTA试验的检测价格受多方面因素影响,无法一概而论。主要影响因素包括:检测项目的数量与类型,例如仅进行粒径浓度分析还是需要多个项目的组合表征;所选用的检测方法与技术路线;送检样品的数量,批量送检通常可以享受更优惠的方案;检测周期的要求,加急服务会相应增加费用成本;以及是否需要额外的样品前处理服务。不同研究需求的费用差异较大,建议您在送检前联系客服或技术顾问,详细说明样品类型、检测内容和数量等信息,获取准确的报价方案。

问题三:外泌体NTA试验对送检样品的浓度有什么要求?

NTA检测对样品浓度有一定要求范围,浓度过高时视野内颗粒过密,颗粒运动轨迹相互交叉,跟踪准确性下降;浓度过低时单位视野内颗粒数量不足,统计代表性不够。一般建议样品颗粒浓度稀释至每毫升10的7次方至10的9次方范围内进行检测。实验室收到样品后通常会先进行预实验摸索合适的稀释倍数,因此送检时样品浓度稍高或稍低一般都可以通过稀释调整解决,但如果样品浓度极低,建议提前与技术人员沟通评估。

问题四:NTA试验能否区分外泌体与其他细胞外囊泡或杂质颗粒?

NTA技术本身是基于颗粒的物理特性进行检测,凡是能散射激光并被相机捕捉的纳米级颗粒都会被计数和测量,因此NTA无法从化学本质上区分外泌体、微囊泡、脂蛋白颗粒或蛋白聚集体等不同类型的颗粒。如果样品纯化程度不高,NTA结果反映的是样品中全部纳米颗粒的粒径分布和总浓度。如需对外泌体进行特异性鉴定,建议结合透射电子显微镜形态观察和CD9、CD63、TSG101等外泌体标志蛋白的免疫学检测,多种方法联合使用才能全面表征外泌体。

问题五:外泌体样品送检前应该如何保存和运输?

外泌体样品建议在提取后尽快检测,如需保存,短期可于4摄氏度存放,长期保存建议分装后置于零下80摄氏度冰箱冻存,避免反复冻融,反复冻融会导致外泌体膜结构破坏和颗粒聚集,使检测的粒径分布异常偏大。运输过程中建议使用干冰冷链寄送,并做好样品编号和防漏包装。细胞培养上清等原始样品也可以直接送检,由实验室完成外泌体提取后再进行NTA检测。

问题六:外泌体NTA试验的检测报告包含哪些内容?

外泌体NTA试验完成后出具的检测报告一般包含以下内容:样品基本信息与编号、检测方法原理说明、样品前处理与稀释过程、仪器型号与检测参数设置、粒径分布图谱、平均粒径数值、D10/D50/D90等特征粒径参数、颗粒浓度结果、检测视频截图以及结果分析和说明。报告数据可直接用于论文发表和课题研究,如有特殊格式要求可在送检前说明,实验室会根据需求调整报告内容。

问题七:为什么不同批次外泌体样品的NTA检测结果会有波动?

外泌体NTA检测结果出现批次间波动的原因较多:一是外泌体提取过程本身的重现性问题,超速离心、试剂盒提取等方法的操作差异会导致得率和纯度波动;二是样品保存状态不同,冻融次数多的样品颗粒聚集程度更高;三是细胞培养条件变化,如细胞状态、培养基血清来源等都会影响外泌体分泌量;四是检测时的稀释倍数和仪器参数设置差异。为减小波动,建议统一样品处理和保存流程,固定提取方法,并在条件允许的情况下对同批样品进行平行重复检测,以获得更稳定可靠的表征数据。

编辑:北检院编辑部

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